1. 투여 경로 및 권장 용량
[표로 제시된 권장 용량]
• 마우스, 랫트, 토끼, 개, 원숭이, 미니 돼지 등 동물 종별로
투여 경로(경구, 피하, 복강, 근육, 정맥) 및 최적/최대 용량이 구체적으로 제공
[투여 경로별 최대 용량 제한]
• 동물 복지와 시험의 과학적 타당성을 위해 투여량이 최대치를 초과하지 않도록 설정.
• 반복 투여 시, 동물의 복지와 시험 결과의 신뢰성을 유지하기 위해 사전에 계획이 철저히 검토
2. 투여 경로별 주의사항
[경구투여]
• 시험물질의 흡수에 영향을 줄 수 있는 요소
(예: 사료 섭취 제한) 고려 필요.
• 고용량 투여 시 위장 부담, 식도 역류 가능성 존재.
[비경구투여]
• 용량, 점도, 삼투압, pH 등 용액의 특성이 시험결과에 영향을 미칠 수 있으므로 신중한 조제 필요.
[피하 및 근육투여]
• 피하주사: 주사 부위는 하루 2~3군데로 제한.
• 근육주사: 염증 및 신경 손상을 방지하기 위해 부위를 순환하며 주사해야 함.
[정맥투여]
• 급속, 저속, 지속적 주입(점적)으로 구분되며, 주입 속도 및 용량에 따라 동물에게 미치는 영향 상이.
• 예: 랫트에서는 급속 투여 시 속도 제한(3 mL/min)을 초과하지 않아야 함.
3. 용매 선택
• 시험물질의 흡수를 최적화하고, 동물에게 독성을 유발하지
않는 용매 선택 필요.
• 등장성 수용액, 완충액, 현탁액, 기름 등 다양한 용매별로
고려사항 명시.
• 예: 기름에 녹인 시험물질은 투여량을 권장 용량의 50%로
줄여야 함.
4. 동물 복지 및 윤리적 고려
• 과도한 투여로 인한 생리적 변화(예: 염증, 통증) 방지.
• 시험물질 투여 전 in vitro 시험 및 소규모 동물 예비시험을
통한 안전성 검토.
• 동물 실험 윤리위원회의 심사와 승인 필수.
5. 기타 참고 내용
• 각 투여 경로의 장단점과 과학적/윤리적 고려사항이 포함됨.
• 정맥투여, 복강투여 등 특수 경로에서 발생할 수 있는 문제와 대처 방법 설명.
• 참고문헌을 통해 신뢰도 높은 가이드라인 제공.
참고문헌
1) Zeoli A, Donkin H, Crewell C, Fetrow N, Johnson DK, Kinter LB.
A limit rapid intravenous injection volume in dogs [Abstract]. Toxicol Sci. 1998; 42:58.
2) Morton D, Safron JA, Rice DW, Wilson DM, White RD. Effects of infusion rates in rats receiving repeated large volumes of saline solution intravenously. Lab. Anim. Sci. 1997; 47: 656-659.
3) Morton D, Safron JA, Glosson J, Rice DW, Wilson DM, White RD. Histologic lesions associated with intravenous infusions of large volumes of isotonic saline solution in rats for30 days. Toxicol. Pathol. 1997; 25: 390-394.
4) McKeon ME, Walker MD, Wakefield AE, Machotka SV. Validation of infusion techniques in nonpregnant and pregnant rabbits using a novel harness system [Abstract]. Toxicol. Sci. 1998; 42: 292.
5) Cave DA, Schoenmakers ACM, van Wijk JH, Enninga IC, Van der Hoeven JCM. Continuous intravenous infusion in the unrestrained rat - procedures and results. Hum. Exp. Toxicol. 1995; 14: 192-200.
6) Barrow PC, Heritier B. Continuous deep intravenous infusion in rat embryotoxity studies: the effects of infusion volume and two different infusion fluids on pregnancy. Toxicol. Methods 1995; 5: 61-67.
7) Loget O, Nanuel C, Le Bigot J-F, Forster R. Corneal damage following continuous infusion in rats. In Advances in Ocular Toxicology, Green, Edelhauser HF, Hackett RB, Hull DS, Potter DE (eds.). Plenum Press: New York, 1997; 55-62.
8) Van Wijk H. A continuous intravenous infusion technique in the unrestrained mouse. Anim Technol. 1997; 48: 115-128.
9) Perkin CJ, Stejskal R. Intravenous infusion in dogs and primates. J Am. Coll. Toxicol. 1994; 13: 40-47.
10) Cornelius LM, Finco DR, Culver DH. Physiologic effects of rapid infusion of Ringer’'s Lactate solution into dogs. Am. J. Vet. Res. 1978; 39: 1185-1190.
1. 투여 경로 및 권장 용량
[표로 제시된 권장 용량]
• 마우스, 랫트, 토끼, 개, 원숭이, 미니 돼지 등 동물 종별로 투여 경로(경구, 피하, 복강, 근육, 정맥) 및 최적/최대 용량이 구체적으로 제공
[투여 경로별 최대 용량 제한]
• 동물 복지와 시험의 과학적 타당성을 위해 투여량이 최대치를 초과하지 않도록 설정.
• 반복 투여 시, 동물의 복지와 시험 결과의 신뢰성을 유지하기 위해 사전에 계획이 철저히 검토
2. 투여 경로별 주의사항
[경구투여]
• 시험물질의 흡수에 영향을 줄 수 있는 요소(예: 사료 섭취 제한) 고려 필요.
• 고용량 투여 시 위장 부담, 식도 역류 가능성 존재.
[비경구투여]
• 용량, 점도, 삼투압, pH 등 용액의 특성이 시험결과에 영향을 미칠 수 있으므로 신중한 조제 필요.
[피하 및 근육투여]
• 피하주사: 주사 부위는 하루 2~3군데로 제한.
• 근육주사: 염증 및 신경 손상을 방지하기 위해 부위를 순환하며 주사해야 함.
[정맥투여]
• 급속, 저속, 지속적 주입(점적)으로 구분되며, 주입 속도 및 용량에 따라 동물에게 미치는 영향 상이.
• 예: 랫트에서는 급속 투여 시 속도 제한(3 mL/min)을 초과하지 않아야 함.
3. 용매 선택
• 시험물질의 흡수를 최적화하고, 동물에게 독성을 유발하지 않는 용매 선택 필요.
• 등장성 수용액, 완충액, 현탁액, 기름 등 다양한 용매별로 고려사항 명시.
• 예: 기름에 녹인 시험물질은 투여량을 권장 용량의 50%로 줄여야 함.
4. 동물 복지 및 윤리적 고려
• 과도한 투여로 인한 생리적 변화(예: 염증, 통증) 방지.
• 시험물질 투여 전 in vitro 시험 및 소규모 동물 예비시험을 통한 안전성 검토.
• 동물 실험 윤리위원회의 심사와 승인 필수.
5. 기타 참고 내용
• 각 투여 경로의 장단점과 과학적/윤리적 고려사항이 포함됨.
• 정맥투여, 복강투여 등 특수 경로에서 발생할 수 있는 문제와 대처 방법 설명.
• 참고문헌을 통해 신뢰도 높은 가이드라인 제공.
[참고문헌]
1) Zeoli A, Donkin H, Crewell C, Fetrow N, Johnson DK, Kinter LB. A limitrapid intravenous injection volume in dogs [Abstract]. Toxicol Sci. 1998; 42:58.
2) Morton D, Safron JA, Rice DW, Wilson DM, White RD. Effects of infusion rates in rats receiving repeated large volumes of saline solution intravenously. Lab. Anim. Sci.1997; 47: 656-659.
3) Morton D, Safron JA, Glosson J, Rice DW, Wilson DM, White RD. Histologic lesions associated with intravenous infusions of large volumes of isotonic saline solution in rats for30 days. Toxicol. Pathol. 1997; 25: 390-394.
4) McKeon ME, Walker MD, Wakefield AE, Machotka SV. Validation of infusion techniques in nonpregnant and pregnant rabbits using a novel harness system [Abstract]. Toxicol. Sci. 1998; 42: 292.
5) Cave DA, Schoenmakers ACM, van Wijk JH, Enninga IC, Van der Hoeven JCM. Continuous intravenous infusion in the unrestrained rat - procedures and results.Hum. Exp. Toxicol. 1995; 14: 192-200.
6) Barrow PC, Heritier B. Continuous deep intravenous infusion in rat embryotoxity studies: the effects of infusion volume and two different infusion fluids onpregnancy. Toxicol. Methods 1995; 5: 61-67.
7) Loget O, Nanuel C, Le Bigot J-F, Forster R. Corneal damage following continuous infusion in rats. In Advances in Ocular Toxicology, Green, Edelhauser
HF, Hackett RB, Hull DS, Potter DE (eds.). Plenum Press: New York, 1997; 55-62.
8) Van Wijk H. A continuous intravenous infusion technique in the unrestrained mouse. Anim Technol. 1997; 48: 115-128.
9) Perkin CJ, Stejskal R. Intravenous infusion in dogs and primates. J Am. Coll. Toxicol.1994; 13: 40-47.
10) Cornelius LM, Finco DR, Culver DH. Physiologic effects of rapid infusion of Ringer’'s Lactate solution into dogs. Am. J. Vet. Res. 1978; 39: 1185-1190.
